Посев на чувствительность к антибиотикам при туберкулезе

Анализ мокроты на микрофлору и чувствительность к антибиотикам является микробиологическим исследованием отделяемого из бронхов, которое выполняется для определения находящихся там микроорганизмов и выбора препаратов для этиотропной терапии. Это исследование обычно назначается пациентам с заболеваниями бронхов и легких. Чаще мокрота получается путем отхаркивания или при помощи аспирации. В некоторых случаях забор материала для анализа выполняется во время проведения бронхоскопии.

Какие микроорганизмы могут находиться в мокроте? Кому назначается этот анализ и как он проводится? Что может повлиять на его результаты? Ответы на эти вопросы можно получить, прочитав эту статью.

Основными показаниями для назначения анализа мокроты на микрофлору и чувствительность к антибиотикам являются следующие случаи:

При отсутствии заболеваний в мокроте могут выявляться следующие симбиотические микроорганизмы (нормальная микрофлора):

Streptococcus viridans group.;
Staphylococcus spp.;
Bacteroides spp.;
Corynebacterium spp. (кроме Corynebacterium diphtheria);
Veillonella spp.;
Neisseria spp. (кроме Neisseria meningitidis);
Candida spр.;
Lactobacillus spp.;
Fusobacterium spp.;
дифтероиды.

При оценке результатов анализов пациентов со сниженным иммунитетом следует учитывать, что при повышении показателей количества представителей нормальной микрофлоры могут развиваться заболевания (т. е. они становятся их возбудителями). Клинически значимыми в таких случаях являются следующие показатели:

10 6 – 10 7 КОЕ/мл в мокроте;
10 4 – 10 5 КОЕ/мл в бронхиальных смывах после бронхиального лаважа.

Наиболее часто встречающимися в мокроте патогенными микроорганизмами являются:

высокопатогенные: Haemophilus influensae, Streptococcus pneumonia, Staphylococcus aureus, Кlebsiella pneumonia;
среднепатогенные: энтеробактерии, Moraxella (Branhamella) cataralis, Cand >

При назначении этого анализа врач обязательно объясняет больному, для чего он необходим и как выполняется. Этот метод диагностики должен проводиться до назначения антибиотиков или спустя некоторое время после завершения их приема. Однако в некоторых случаях допускаются исключения. При туберкулезе мокрота сдается 3 дня подряд в утренние часы.

Если анализ проводится путем отхаркивания, то за день перед его сдачей больному (при отсутствии противопоказаний) следует пить много жидкости. Пациент должен понимать, что в контейнер для сбора материала должна собираться не слюна, а именно мокрота. Для получения продуктивного кашля его обучают следующей процедуре: после проглатывания слюны и трех глубоких вдохов выполняется энергичное покашливание. Утром в день исследования пациент должен почистить зубы и хорошо прополоскать ротовую полость для уменьшения ее обсемененности другими микроорганизмами.

При сборе мокроты методом аспирации врач обязательно предупреждает больного о том, что при введении катетера он может чувствовать незначительный дискомфорт. Если материал будет собираться во время бронхоскопии, то пациент не должен принимать пищу за 6 часов до процедуры. Кроме этого, врач уточняет у больного информацию о возможном присутствии аллергии на местные анестетики.

При заборе мокроты путем откашливания медицинская сестра надевает перчатки и просит больного проглотить слюну, выполнить 3 глубоких вдоха и энергично покашлять. При отсутствии мокроты проводят вдыхание теплого аэрозоля, облегчающего выведении отделяемого. Полученную мокроту пациент сплевывает в стерильный контейнер, который герметично закрывается, маркируется и помещается в дополнительный пластиковый пакет.

Если забор мокроты для анализа проводится путем аспирации, то при необходимости до и после процедуры выполняется ингаляция кислорода. Далее специалист надевает на руки перчатки, присоединяет ловушку для сбора мокроты к катетеру и погружает его в физиологический раствор. После этого катетер медленно вводят через ноздрю в трахею, и при его прохождении через гортань у больного возникает кашель. В этот момент при помощи шприца выполняется аспирация отделяемого, которая должна длиться не более 15 секунд. После этого катетер вынимается из дыхательных путей и выбрасывается. Отсоединенную от шприца ловушку герметично упаковывают, маркируют и отправляют в лабораторию.

Перед бронхоскопией глотку больного орошают и прополаскивают раствором местного анестетика. После начала действия препарата бронхоскоп вводят в просвет бронха и при помощи специальной щеточки собирают необходимый для анализа материал. Мокрота может получаться путем ее аспирации через внутренний канал прибора (иногда перед этим стенка бронха орошается физиологическим раствором). После завершения процедуры бронхоскоп извлекают из дыхательных путей. Полученный образец упаковывают в стерильный контейнер, маркируют и отправляют на исследование.

Материал для анализа должен отправляться в лабораторию сразу же после забора. В некоторых случаях разрешается хранение образцов мокроты на протяжении 2-3 часов в холодильнике при 4 °С.

Иногда допускается сдача мокроты на анализ уже после начала приема антибактериальных средств. При таких обстоятельствах на бланке направления обязательно должны указываться принимаемые больным препараты.

Исказить результаты анализа мокроты на микрофлору и чувствительность к антибиотикам могут следующие факторы:

неправильная техника сбора мокроты;
отсутствие указаний на бланке о проводимой антибактериальной терапии;
задержка при отправке образцов в лабораторию.

Посев мокроты выполняют в чашках Петри на питательные среды (агар, мясопептонный бульон, желатин), к которым иногда добавляют сыворотку, кровь или углеводы. Далее образцы инкубируют в благоприятных для роста микроорганизмов условиях при температуре 36-37 °С на протяжении 18-24 часов. Выделенную из колоний чистую культуру идентифицируют.

После получения колоний возбудителя заболевания приступают к анализу, определяющему его чувствительность к антибактериальным препаратам. Для этого обычно применяется методика дисков, которые смачиваются растворами разных антибиотиков и помещаются в колонию выделенных микроорганизмов. После этого выполняется изучение скорости гибели возбудителя заболевания под воздействием того или иного препарата. Результаты позволяют выбирать наиболее эффективный антибиотик для лечения заболевания.

Расшифровка результатов проводится лечащим врачом.

Анализ мокроты на микрофлору показан при длительном кашле. Поэтому его обычно назначает пульмонолог. Если диагноз еще не установлен, следует обратиться к терапевту для предварительного обследования. Также анализы мокроты используют в практической работе фтизиатры при подозрении на открытые формы туберкулеза.

источник

Бактериологический посев – это анализ, выявляющий в том числе чувствительность патогенного микроорганизма к антибактериальным лекарственным средствам. С помощью этого метода исследования биологического материала специалисты определяют тип возбудителя инфекции, его концентрацию и патогенность, что помогает врачу назначить адекватное, эффективное для конкретного клинического случая специфическое лечение.

Посев на чувствительность, называемый еще бакпосевом на микрофлору – это вид исследования, применяемый при диагностике венерологических, гинекологических, урологических, дерматологических и других инфекционных заболеваний. После забора биологического материала производится его посев в различные питательные среды. Спустя некоторое время «разросшиеся» на нем в результате искусственного культивирования микроорганизмы тестируют на чувствительность к разным типам антибиотиков или противомикробных препаратов.

Исследование, называемое антибиотикограммой, демонстрирует, от препаратов какой фармакологической группы быстрее всего погибнет возбудитель инфекции. Кроме того, анализ определяет концентрацию патогенных микроорганизмов (выражается в КОЕ/мл, называемых колониеобразующими единицами), их резистентность (устойчивость) по отношению к медикаментозным средствам и внешним факторам. Для проведения исследования могут забираться следующие биоматериалы:

кровь;
урина;
желчь;
кал;
сперма;
спинномозговая жидкость;
слизь из уретры;
слизь из цервикального канала;
слизь из зева;
слизь из носоглотки;
мокрота;
содержимое кисты;
содержимое очага воспаления;
раневое отделяемое;
грудное молоко;
секрет простаты.

Выращивание колоний патогенных микроорганизмов на исследуемых материалах проводят в чашках Петри, либо сначала в жидкой среде, а затем на скошенном агаре в термостате на протяжении суток. После штаммы полученной культуры переносят на предметное стекло, окрашивают и изучают морфологические свойства микроорганизма под микроскопом. Внимание обращают на размер и форму клеток и их тинкториальные свойства (отношение к окрашиванию).

Бакпосев на микрофлору широко применяется в медицинской практике при диагностике инфекционно-воспалительных заболеваний (в гинекологии, урологии, венерологии, отоларингологии, хирургии и других областях), и при риске развития сепсиса (системной реакции на развивающееся воспаление). Анализ на чувствительность к антибиотикам позволяет выявить и вывести возбудителей следующих заболеваний:

бактериальный вагинит;
инфекционные ЗППП (заболевания, передающиеся половым путем);
хламидиоз;
гонорея;
трихомониаз;
цистит;
кишечная инфекция;
пневмония;
туберкулез;
ангина и мн. др.

Определение чувствительности к антибиотикам при беременности проводится как минимум дважды – сразу после постановки на учет и на 36 неделе. Делается мазок из влагалища и со слизистой оболочки зева и носоглотки. Биоматериал исследуют, определяют наличие урологических и мочеполовых инфекций и золотистого стафилококка – возбудитель, провоцирующий гнойный мастит, послеродовой сепсис и др. инфекции в период после родоразрешения. При наличии показаний (заболевания почек, повышенный уровень лейкоцитов в моче и др.) могут назначаться:

посев мочи;
мазок из шейки матки;
соскоб влагалищного эпителия;
бактериальный посев из цервикального канала.

В зависимости от типа биоматериала и показаний к проведению анализа по результатам исследования выделяют следующие виды патогенных возбудителей бактериальных инфекций:

Слизь из носоглотки и зева: золотистый стафилококк, гемолитический стрептококк, менингококк, листерия, коринебактерия дифтерии, гемофильная палочка, синегнойные пневмококки.
Гнойное отделяемое, содержимое ран, биопунктат: синегнойная палочка, псевдомонада.
Урогенитальная слизь: бактериальная флора, возбудители мочеполовых инфекций (микоплазма, гарднерелла, уреаплазма, трихомонада, грибы, гонококк, листерия).
Каловые массы: тифопаратифозная бактериальная группа, кишечная группа (иерсинии, сальмонеллы, шигеллы), анаэробные возбудители пищевых инфекций, условно-патогенные возбудители кишечных инфекций.
Кровь исследуют на стерильность.
Остальные биожидкости – на обсемененность (бактериальную флору).

По статистике, около 80% ошибок в лабораторных исследованиях вызваны ошибками при сборе и транспортировке материалов для обследования. Как правило, забор осуществляет медицинский персонал, но некоторые биоматериалы больной собирает сам. Поэтому при подготовке к сдаче анализа необходимо соблюдать следующие общие правила:

Во время забора биоматериала требуется исключить попадание в него антисептических или дезинфицирующих соединений, обсеменения бактериями и иными организмами. Для этого инструментарий и посуда для сбора должны быть стерильными.
На результаты посева на антибиотики влияет прием пациентом антибактериальных и иных медикаментозных препаратов. О терапии необходимо сообщить назначившему анализ врачу, применение лекарств необходимо приостановить за срок не менее 10 суток до назначенной даты анализа.
Материалы для обследования должны быть доставлены в лабораторию в специальных герметичных контейнерах в максимально короткие сроки. Во время транспортировки собранные биологические жидкости должны быть защищены от воздействия света, температур, механического воздействия.

Бактериологический посев на чувствительность к антибиотикам проводится на разных видах биоматериала. В зависимости от их типа необходимо соблюдать следующие предписания специалистов при заборе проб:

Сбор мочи производят по утрам, натощак, после предварительно проведенных гигиенических процедур. Необходимый объем урины составляет от 10 до 15 мл. Забор производят в специальную стерильную посуду, материал должен быть доставлен в лабораторию не позднее чем через два часа.
Мазок на чувствительность к антибиотикам из носоглотки или зева проводят по утрам, до приема пищи и воды и до проведения гигиенических процедур (чистки зубов и полоскания рта).
Сбор кала производится утром, стерильной лопаткой в стерильную посуду, необходимый объем биоматериала – до 30 мг. Недопустимо попадание мочи, использование клизмы или слабительных препаратов, замораживание. Срок доставки в лабораторию не должен превышать 3-5 часов.
Проба мокроты доставляется в место проведения исследования на протяжении часа после забора, который проводят натощак, после предварительной чистки зубов и полоскания рта.
Пробу грудного молока берут после проведения гигиенических процедур и обработки кожи вокруг соска спиртом. Перед забором материала в объеме 5 мл (в стерильную посуду) сцеживают от 15 мл жидкости. Время доставки в лабораторию не должно превышать 2 часов.
Мазок со слизистых влагалища и другие виды забора материала на мочеполовые инфекции. Анализ проводят не ранее чем через 2 недели после окончания менструации (точную дату определит врач на основе данных о месячном цикле). Последнее мочеиспускание должно быть проведено за два часа до взятия пробы у женщин и за 5-6 – у мужчин.
Объем забранной для посева крови у детей составляет 5 мл, у взрослых – 15 мл.

Посев на флору и чувствительность к антибиотикам проводится в течение некоторого продолжительного времени (по сравнению с готовностью результатов других анализов). Выделение штаммов проводится не одинаково, потому что разные биологические среды человеческого организма требуют индивидуальных подходов. Примерные сроки результатов анализов для разных типов биоматериала:

Кал: от 5 дней до недели.
Урогенитальные материалы: 4-10 дней.
Кровь: 10-14 дней (первые предварительные данные готовы через 3-4 дня).
Слизь из зева или носоглотки: от 5 до 7 дней.
Посев на флору: 5-10 дней.

Бактериологический посев на чувствительность к антибиотику дает представление о качественной и количественной оценке исследуемого образца. Качественная оценка (наличие возбудителя) классифицируется по следующим четырем степеням роста:

Первая. При этой степени рост на твердой среде отсутствует, на жидкой регистрируется небольшой рост.
Вторая. Небольшой рост на твердой среде (до 10 колоний).
Третья. Значительный рост на твердой среде (10-100 колоний).
Четвертая. Больше 100 колоний.

При обнаружении в результате исследования условно-патогенной микрофлоры (непатогенных грамотрицательных бактерий) первые две степени относят к норме, при третьей или четвертой степени говорят о присутствии в организме микробов-возбудителей инфекции, размножение которых стало причиной возникновения и развития заболевания. При наличии в материале патогенной микрофлоры все четыре степени свидетельствуют о наличии болезни. Например, сапрофитная микрофлора в бакпосеве мочи свидетельствует об инфекции мочеполовой системы.

Количественная оценка проводится в колониеобразующих единицах (КОЕ), обозначающих объединение (сообщество) клеток бактерий, образовавших колонию. Она помогает установить степень обсемененности и проконтролировать достаточность назначенных для лечения дозировок лекарственных средств (адекватность проведенных медикаментозных назначений). Принято следующее условное соотношение КОЕ и миллилитров:

1 колония – это 103 КОЕ/мл.
1-5 колоний – это 104 КОЕ/мл.
5-15 колоний – это 105 КОЕ/мл.
более 15 колоний – это 106 КОЕ/мл

Тест на чувствительность к антибиотикам, проводимый одновременно с посевом на определение возбудителя инфекции, называют антибиотикограммой. Выделив патогенный микроорганизм, его пересаживают в благоприятную для роста среду, где исследуется резистентность (чувствительность) конкретного штамма к активным компонентам антибактериальных препаратов. Чувствительные к антибиотику патогенные клетки не растут в зоне его действия, устойчивые показывают рост колоний.

Распространенным методом проведения антибиотикограммы является метод диффузии смоченных в антибактериальном препарате бумажных полосок в чашке Петри с исследуемой средой. Их выкладывают по поверхности, отступая на два сантиметра от края чашки и от друг друга. После 5-7 часов при комнатной температуре чашу помещают в термостат на срок от 3 до 5 дней. По результатам исследования рост колоний оценивается следующим образом:

Кольцо вокруг полоски диаметром от 2,5 см говорит о повышенной чувствительности микрофлоры к препарату;
2,5-1,5 см – стандартная чувствительность (средняя клиническая эффективность).
до 1,5 см – слабая реакция, лечение с высокой вероятностью не будет эффективным.
Отсутствие задержки роста колонии – полная устойчивость к медикаментозному средству.

источник

Посев на туберкулезную палочку осуществляется с целью выявления туберкулеза у пациента. Основным методом диагностики данного заболевания является анализ мокроты, так как он считается наиболее точным. Среди недостатков этого метода можно выделить сроки ожидания результатов. Также для диагностики в качестве материала может использоваться кровь, моча, слизь или кал.

Главной проблемой при диагностике туберкулеза является длительное время ожидания результатов. Это объясняется тем, что отдельные виды МБТ растут очень долго (до трех месяцев). Ввиду этого, посевы содержат в термостате на протяжении всего этого периода.

Колонии МБТ имеют разнообразный размер и вид, развиваются на плотных яичных средах в виде R-форм. Им присущи цвет слоновой кости и морщинистая поверхность (если проводился курс химиотерапии, то поверхность может становиться гладкой). В ходе диагностики используется ряд методик, которые дают возможность отличить МБТ от других видов микобактерий и сапрофитов.

Для правильной трактовки данных анализа и планирования курса терапии важно не только определить, имеются ли в анализах МБТ. Нужно также определить их популяцию, состав, свойства, объем и ее характер.

Рост микроорганизмов в посеве регистрируют оптическим путем. В процессе своего развития микобактерии потребляют кислород, что приводит к уменьшению его доли в пробирке. Происходит усиление флюоресценции, после чего ее можно наблюдать при облучении, а специальные датчики ее регистрируют. После этого полученная информация вносится в компьютер и сохраняется для последующего анализа кривых роста.

С целью увеличения темпов роста туберкулезных палочек используется специальная среда, основой для которой служит агар с применением газовой смеси и ростовых добавок. Помимо этого используются автоматизированные системы для культивации микобактерий, применение которых способно сократить сроки роста микобактерий до 20 дней.

Этот тест позволит вам определить вероятность того, есть ли у вас туберкулез.

Вы уже проходили тест ранее. Вы не можете запустить его снова.

Вы должны войти или зарегистрироваться для того, чтобы начать тест.

Вы должны закончить следующие тесты, чтобы начать этот:

Но не забывайте так же следить за своим организмом и регулярно проходить медицинские обследования и никакая болезнь вам не страшна!
Так же рекомендуем ознакомиться со статьей по выявлению туберкулеза на ранних стадиях .

С точностью сказать, что вы болеете туберкулезом сказать нельзя, но такая вероятность есть, если это и не палочки коха , то с вашим здоровьем явно что то не так. Рекомендуем вам незамедлительно пройти медицинское обследование. Так же рекомендуем ознакомиться со статьей по выявлению туберкулеза на ранних стадиях .

Вероятность того что вы поражены палочками коха очень высока, но дистанционно поставить диагноз не возможно. Вам следуем немедленно обраться к квалифицированному специалисту и пройти медицинское обследование! Так же настоятельно рекомендуем ознакомиться со статьей по выявлению туберкулеза на ранних стадиях .

Связан ли ваш образ жизни с тяжелыми физическими нагрузками?

Как часто вы проходите тест на выявление туберкулеза(напр. манту)?

Тщательно ли соблюдаете личную гигиену (душ, руки перед едой и после прогулок и т.д.)?

Заботитесь ли вы о своем иммунитете?

Болели ли у Ваши родственники или члены семьи туберкулезом?

Живете ли Вы или работаете в неблагоприятной окружающей среде (газ, дым, химические выбросы предприятий)?

Как часто вы находитесь в помещении с сыростью или запыленными условиями, плесенью?

Испытывали ли Вы в последнее время ощущение сильной усталости без особой на то причины?

Испытываете ли в последнее время ощущение физического или психического недомогания?

Не замечали ли вы за собой в последнее время слабый аппетит?

Да, есть такое, хотя раньше все было нормально
Я в целом не много ем
Нет, с аппетитом у меня все в порядке

Не наблюдали ли вы за собой в последнее время резкое снижение при здоровом, обильном питании?

Да, много сбросил в последнее, хотя с питанием все в порядке
Есть немного, но не сказал бы что это очень критично
В последнее время прилично сбросил, но это результат правильного питания!
Нет, не замечал за собой такого

Чувствовали ли вы в последнее время повышение температуры тела на длительное время?

Беспокоят ли вас в последнее время нарушения сна?

Замечали ли вы за собой в последнее время повышенную потливость?

Наблюдали ли вы за собой в последнее время нездоровую бледность?

Выделение микобактерий в искусственных условиях затруднительно. В посеве наблюдается незначительный рост, а сами культуры образуются в течение месяца. Вторичная бактериальная флора, присутствующая в анализе, развивается быстрее, чем микобактерии, вследствие чего развитие микобактерий туберкулеза усложняется.

Туберкулезные палочки неподвижны, спор и капсул не имеют. Их размножение происходит посредством деления и распадения на зерна, из которых в дальнейшем развиваются микобактерии туберкулеза.

Среди основных способов выращивания чистых культур МБТ выделяют:

посев материала на специальных яичных средах;
обработка патологического материала по методу Гона.

При выращивании по методу Гона используется серная кислота. В пробирку добавляется 10 см 3 ее раствора (при концентрации 10-15%), после чего она встряхивается на протяжении 20 минут с целью достижения гомогенизации. Далее пробирка помещается на центрифугу, где находится в течение 5 минут. По окончании процесса центрифугирования оставляют только осадок, который растирается и размазывается тонким слоем без промывания по поверхности заранее подготовленной субстанции яичной среды.

Серная кислота не должна воздействовать на исследуемый образец дольше получаса. В противном случае результаты будут некорректны.

Основой для питательной среды, в которую добавляют посев туберкулезной палочки, являются яйца. Существует несколько вариантов ее изготовления: по методике Виноградова, по методике Любснау и по методике Дорсэ.

Два последних метода отличаются между собой лишь тем, что в первом случае используется и желток, и белок, а во втором — только желток.

В остальном их последовательность одинакова:

одна часть глицеринового раствора, концентрацией 5%, добавляется к яйцу;
посуда встряхивается до момента достижения гомогенизации;
проводится фильтрация полученной среды при помощи марли;
полученная жидкость наливается в пробирки по 5 см 3 ;
пробирки с жидкостью прогреваются в специальном аппарате.

При проведении приготовлений к посеву, а также при хранении материала следует придерживаться ряда правил:

Вся посуда, используемая при приготовлении, обязательно является стерильной.
Марля, через которую пропускается раствор для фильтрации, также должна быть стерильной.
Хранение материалов осуществляется в чистом, прохладном и темном месте.
Дробное свертывание осуществляется посредством специального аппарата на протяжении трехдневного периода (в течение часа, в первый день при температуре 90 °C, в два последующих — 70 °C).
С целью контроля изучаемая субстанция должна еще три дня находиться в термостате, а его температура устанавливается на уровень 37,5-38 °C.

При заболеваниях дыхательной системы для установления диагноза берется мокрота. Ее анализ позволяет выявить наличие в ней микобактерий туберкулеза. Если организм человека находится в здоровом состоянии, то мокрота (секреция слизистой оболочки бронхов) не выделяется.

Начальная стадия заболевания туберкулезом характеризуется выделением незначительного количества мокроты (она имеет слизисто-гнойный характер) или полным ее отсутствием. Кашель пациента сухой и имеет низкую интенсивность.

Опасной разновидностью туберкулеза является кавернозная форма.

Это заболевание сопровождается разрушением кровеносных сосудов в организме человека, а в мокроте часто встречаются:

рисовые тельца (линзы Коха);
кровь;
разнообразные эластичные волокна и кристаллы.

Уровень белка в мокроте при заболевании туберкулезом значительно выше, чем при бронхите.

Для более достоверной диагностики следует соблюдать следующие правила, когда мокрота собирается на посев при туберкулезе:

Сбор должен осуществляться в специальный стерильный контейнер, который пациент может получить в лаборатории.
Перед сбором мокроты необходимо прополоскать рот или произвести обработку зубов специальной пастой.
Лучше всего отхаркивание производить утром на голодный желудок. Этот период является оптимальным для сбора, так как выделяется достаточное количество мокроты.
Анализы должны быть доставлены для лабораторных исследований не более чем через два часа после сбора.

Если мокрота была собрана правильно, то она носит слизисто-гнойный или слизистый характер. Ее объем для исследований должен составлять примерно 3-5 мл.

Возбудителем туберкулеза является кислотоустойчивая микобактерия.

Среди основных ее видов выделяются:

Mycobacterium tuberculosis (человеческий вид).
Mycobacterium africanum (промежуточный вид).
Mycobacterium bovis (бычий вид).

Чаще всего туберкулезное заболевание у человека вызывается первым видом (примерно в 92% случаев). На два других вида приходится, соответственно, 5 и 3% случаев.

Тело МБТ имеет форму палочки, а размеры по длине не более 10 мкм при диаметре порядка 0,6 мкм. Туберкулезная палочка не имеет ядра, а основой для нее служит туберкулин, который нейтрализует защитные функции организма человека, направленные на борьбу с ней.

Также этот вид микроорганизмов способен мутировать, чтобы приспособиться к среде обитания. Если микобактерии мутировали, то процесс лечения и выведения из организма усложняется. Клеточная структура и внешняя оболочка уплотняются. Основной особенностью данного вида микроорганизмов является их способность жить и развиваться в разнообразных условиях.

Для определения наличия у пациента заболевания туберкулезом используются различные методики, среди которых наибольшее распространение получили:

туберкулинодиагностика;
рентгенологические методы (к ним относится флюорография и рентгенография);
бактериологический метод;
бактериоскопический метод;
стратегия DOTS;
выявление при обращении к врачу.

При проведении туберкулинодиагностики производится внутрикожное введение туберкулина (реакция Манту). Кожа внутренней поверхности средней трети предплечья обрабатывается спиртовым раствором (концентрация 70%), после чего специальным туберкулиновым шприцом в кожу пациента вводится раствор.

Такой способ выявления туберкулеза часто бывает ложноположительным, поэтому необходимо провести повторный анализ. Однако именно по первичной реакции можно выявить наличие МБТ в организме человека.

На территории России главным методом определения туберкулеза является рентгенология. Все граждане проходят ее как минимум 1 раз в 2 года. Главным преимуществом данного метода является пропускная способность и мобильность. Флюорографическая пленка проявляется, просматривается, а данные по результатам осмотра вносятся в специальные журналы.

Рентгенография в основном проводится после того, как один из методов диагностики дал положительный результат. Кроме того, этот способ эффективен, если врач не может дать четкий ответ, туберкулез у пациента или пневмония. Чаще всего проводится прямая обзорная, боковая или продольная рентгенография.

Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) постоянно следит за ситуацией в мире по наиболее значимым заболеваниям, к которым относится и туберкулез. Одним из способов борьбы с этим заболеванием является применение стратегии DOTS. Суть ее сводится к проведению коротких курсов химиотерапии, а эффективность составляет не менее 85%. Кроме того, данная методика наиболее экономична.

Бронхоскопия — специфический метод исследования, при котором осуществляется осмотр просвета и слизистой оболочки бронхов. Бронхоскопия является эндоскопическим методом исследования и проводится не только с лечебной целью, но и с диагностической.

Эта процедура применяется в том случае, если мокрота не выделяется во время кашля. Она проводится посредством специального оборудования. Бронхоскоп имеет мягкую, подвижную трубочку, диаметр которой составляет от 2 до 6 мм. На ее конце крепится источник света и камера, которая передает изображение на монитор. Аппарат вводится через рот или нос пациента в дыхательные пути, а доктор имеет возможность на экране наблюдать за дыхательными путями больного.

Различают два вида бронхоскопии:

ригидная (проводится с применением общей анестезии, поэтому перед началом этой процедуры пациент консультируется у анестезиолога);
фибробронхоскопия (применяется местный наркоз).

Бронхоскопия позволяет оценить не только мокроту, взять ее для анализа, но и удалить из органов дыхания. Перед проведением процедуры нельзя употреблять пищу и жидкости не менее 6 часов.

Исследование образца происходит по бактериологическому методу. Это позволяет обнаружить в анализах свидетельства процесса распада легких — микобактерии, кристаллы холестерина, соли кальция и эластичные волокна. Если был выявлен отрицательный посев в результате исследования при туберкулезе, анализ проводится повторно.

После сбора диагностического материала, его подготавливают для дальнейших анализов. В основе бак посева лежит реакция микобактерий на фуксин, который преобразует их цвет в красный. Содержимое растирается между стеклами таким образом, чтобы площадь мазка занимала не более 2/3 поверхности. Затем препарат размещается над горелкой, чтобы он окрасился при нагревании.

Анализ позволяет выявить МБТ очень быстро, но только при достаточной концентрации в образце мазка. Необходимо, чтобы концентрация микобактерий на 1 мл мокроты составляла хотя бы 100 тысяч, в ином случае тест может показывать ложноотрицательный результат.

Бактериоскопический анализ обладает повышенной чувствительностью, поэтому пациент должен соблюдать все правила сбора мокроты.

Независимо от вида бактериоскопии, фтизиатр указывает в своем заключении следующие пункты:

какие формы МБТ были найдены в мазке;
какой вид МБТ присутствовал в мазке;
какое количество МБТ было обнаружено в мазке.

Бактериоскопия проводится как минимум три раза, чтобы иметь уверенность в ее результатах. Самыми эффективными способами считается люминесцентная и фазово-контрастная микроскопия.

В основе первой лежит реакция туберкулезной палочки на ультрафиолетовое излучение (благодаря этому, анализ мокроты проходит быстрее). Вторая дает возможность наблюдать микобактерии вживую, что позволяет установить более точный диагноз, однако данная процедура является дорогостоящей.

Полимеразная цепная реакция (ПЦР) — метод поиска вирусов в организме при помощи генной инженерии, разработанный в 1983 году. Он позволяет не только выявить заболевание, но и обнаружить биологический материал. Из материала больного выделяют фрагменты частиц ДНК вируса, после чего определяют класс микроорганизма.

К плюсам ПЦР относятся:

скорость обнаружения вирусов в анализе (всего за 3,5-5,5 часов);
высокая точность постановки диагноза даже на начальной стадии развития болезни;
для исследования подходит любая биологическая среда, в которой может присутствовать возбудитель;
для проведения анализа используется малое количество материала.

Среди прочих минусов этой диагностики отмечается ее неэффективность, если туберкулезная палочка мутировала, а также необходимость правильного выбора диагностического материала для исследования (например, при туберкулезе органов нервной системы нет смысла брать для анализа мокроту). Также после окончания лечения в организме человека будут присутствовать мертвые микобактерии, а ПЦР в таком случае дает ложноположительный результат.

Диагностика с помощью ПЦР при туберкулезном заболевании осуществляется в четыре этапа:

Сбор необходимого материала для исследования (кровь, мокрота и так далее).
Воздействие на диагностический материал с помощью высоких температур для разрушения структуры ДНК.
Снижение температуры во время отжига для образования связи между праймером (часть ДНК, участвующая в биосинтезе) и отделенной на прошлом этапе цепью ДНК.
Биологический синтез молекул.

Достаточное количество копий ДНК микобактерий образуется после 25-30 таких циклов.

Многие люди в последнее время отказываются от прохождения профессиональных осмотров и вакцинации, что повышает риск распространения туберкулезной инфекции среди населения. В таких условиях ПЦР диагностика является ключевым методом, который позволяет выявлять в кратчайшие сроки и наиболее информативно наличие микобактерий туберкулеза в организме.

Еще несколько лет назад ответом на этот вопрос было однозначное «Да», но особенности микобактерий создают дополнительные сложности при лечении. МБТ мутируют и приспосабливаются к воздействию препаратов, поэтому при диагностике важно точно определить тип микобактерий и их реакцию на воздействие лекарственных средств.

Для полного излечения туберкулеза пациенту необходимо придерживаться ряда условий:

четко следовать графику приему препаратов, указанному лечащим врачом;
не делать перерывов в курсе лечения даже при ощущении, что туберкулез отступил.

Туберкулез — опасное смертельное заболевание, зачастую носящее латентный характер, поэтому нужно внимательно подходить к процессу лечения. Современные способы лечения и применяемые препараты позволяют справиться с этим недугом.

источник

Весь контент iLive проверяется медицинскими экспертами, чтобы обеспечить максимально возможную точность и соответствие фактам.

У нас есть строгие правила по выбору источников информации и мы ссылаемся только на авторитетные сайты, академические исследовательские институты и, по возможности, доказанные медицинские исследования. Обратите внимание, что цифры в скобках ([1], [2] и т. д.) являются интерактивными ссылками на такие исследования.

Если вы считаете, что какой-либо из наших материалов является неточным, устаревшим или иным образом сомнительным, выберите его и нажмите Ctrl + Enter.

Сегодня туберкулез представляет собой серьезную медицинскую проблему. Заболеваемость туберкулезом все больше возрастает. Лечение становится все менее эффективным, поскольку возбудитель приобретает устойчивость к применяемым антибактериальным препаратам. Фармацевтические компании разрабатывают все новые средства, но со временем и они перестают быть эффективными. В настоящее время многие специалисты убеждены, что антибиотики при туберкулезе остаются единственным надежным средством лечения этого заболевания.

Для лечения применяют преимущественно антибиотики группы аминогликозидов. Наиболее эффективными средствами этой группы являются канамицин и амикацин. Также применяют антибиотики из группы полипептидов, представленные такими препаратами, как капреомицин, циклосерин. Хорошо зарекомендовали себя фторхинолоны. Из этой группы наилучшим образом зарекомендовали себя такие препараты, как ломефлокацин, ципрофлоксацин офлоксацин, левофлоксацин, моксифлоксацин.

Необходимо учитывать, что антибиотики назначаются каждому пациенту индивидуально с учетом чувствительности возбудителя к действующему веществу. Также обязательно учитываются результаты анализа, текущее состояние пациента, степень тяжести заболевания, сопутствующие заболевания. Это связано с тем, что антибиотики, назначаемые для лечения туберкулеза, очень опасны, токсичны и оказывают воздействие не только на возбудителя, но и на организм человека.

При подборе оптимальной схемы лечения, врач старается подобрать такой вариант, при котором препарат будет оказывать максимальное воздействие на микроорганизм, убивая возбудителя заболевания. Также нужно обеспечить минимальное влияние лекарственного препарата на организм человека, обезопасив при этом печень, почки, сердце и другие системы от опасных осложнений.

Большую опасность представляет так называемый лекарственноустойчивый туберкулез – это форма заболевания, при которой возбудитель приобретает устойчивость к применяемому лекарственному препарату, и другим препаратам. Такое может возникнуть при низкой дозировке, при неправильном подборе лекарственного средства, при внезапной мутации микроорганизма.

Если нарушить схему приема препаратов, не принять вовремя препарат, или уменьшить дозу, бактерия может подвергнуться мутации и обрести устойчивость. В редких случаях устойчивость бывает первичной. В большинстве случаев она является результатом неправильной терапии и безответственного отношения пациента к лечению.

Устойчивость может быть как единичной, так и множественной. При единичной микроорганизм приобретает устойчивость только к одному лекарственному препарату. В таком случае сохраняется возможность назначения альтернативного варианта, к которому еще не выработана устойчивость. Более опасной считается множественная устойчивость, при которой бактерия приобретает устойчивость к двум и более микроорганизмам, либо ко всей смежной группе. Это лишает врача возможности подобрать эффективное лечение. В результате болезнь прогрессирует, а лечения для нее нет.

В случае обретения устойчивости возбудителем врачи ищут способы преодолеть инфекцию. Здесь может помочь тест на чувствительность к антибиотикам, который покажет, к какому препарату у возбудителя все еще сохраняется устойчивость. Также при обнаружении эффективного средства можно подобрать его оптимальную дозировку. Но проблема состоит в том, что не всегда есть возможность провести такое исследование и зачастую потому, что не хватает времени. Исследование проводится не мене месяца, потому что сначала необходимо вырастить необходимое количество возбудителя, и только после этого можно провести исследование. В большинстве случае врач не располагает таким временем, поскольку пациент может умереть за это время. Нужно предпринимать срочные меры.

В таком случае обычно медики идут эмпирическим путем, пробуя различные комбинации препаратов. При этом рекомендуется подбирать препараты таким образом, что они перекрывали спектр действия друг друга и воздействовали на различные группы микроорганизмов. Также важно, что был различный механизм действия препарата. Это позволит повысить шанс на успешное лечение. Например, целесообразно применение препарата, который разрушает клеточную мембрану микроорганизма, тем самым предотвращая его дальнейшее развитие. Тогда вторым препаратом стоит выбрать тот, который будет направлен на ингибирование синтеза ферментов и основных биохимических циклов возбудителя, что также приведет к гибели микроорганизма. Таким образом, у нас появляется возможность воздействия на один и тот же микроорганизм с различных сторон.

Часто назначают изониазид и рифампицин, которые могут быть весьма эффективны в отношении возбудителя, но крайне опасны для организма. Они оказывают множественные побочные эффекты на печень, почки, сердце. Изониазид является одним из основных средств, при помощи которых травят собак и кошек. Уровень токсичности говорит сам за себя. Препараты могут разрушать клетки печени и почек, могут вызвать язву желудка. При превышении дозировки или длительном приеме развивается сильная интоксикация, которая может закончиться полным отказом печени и почек.

Поэтому принимать препараты нужно в комплексе с гепатопротекторами и нефропротекторами, всегда держать под рукой противоядие на случай отравления. Антидотом изониазид является пиридоксин, или витамин В. При появлении любых отрицательных побочных эффектов нужно сразу же обращаться к врачу. Прекращать прием или снижать дозу самостоятельно также нельзя, поскольку микроорганизм приобретет устойчивость, и вылечить заболевание будет невозможно. К сожалению, не принимать лекарственные средства больному туберкулезом нельзя, несмотря на высокий риск, поскольку это смертельное заболевание, которое без лечения закончится летальным исходом. Кроме того, заболевание считается социально опасным, поскольку больной может заразить окружающих. Болезнь передается контактным и воздушно-капельным путем.

Изониазид и рифампицин – не единственные возможные комбинации лекарственных препаратов. Средства подбираются индивидуально для каждого человека. При этом комбинация может содержать 5 антибактериальных препаратов и более. Один или два препарата берутся из основных, остальные – из резервных противотуберкулезных средств.

Часто назначают антибиотики в комбинации с противогрибковыми препаратами. Это связано с тем, что развитие грибковой инфекции является одним из побочных эффектов длительной и усиленной антибактериальной терапии. Погибает нормальная микрофлора, ее место очень быстро занимает грибок, который начинает бесконтрольно расти и размножаться. Чаще всего развиваются тяжелые кандидозы, которые поражают гениталии, кишечник, ротовую полость, и другие микробиоценозы. Для подавления роста грибка наиболее эффективным средством считается флюконазол.

Относительно новым лекарственным средством в лечении туберкулеза является перхлозон – препарат, который эффективен в отношении форм микроорганизмов, устойчивых к лекарственным препаратам. Но механизм действия и последствия применения его все еще остаются неизученными.

Также антибиотики против туберкулеза могут существенно снижать иммунитет, в результате чего развивается бактериальная и вирусная микрофлора, организм более подвержен различным заболеваниям. Для поддержания иммунитета назначают противотуберкулезные антибиотики в комплексе с иммуномоделирующими или иммуностимулирующими средствами. Это препараты, которые направлены на восстановление иммунитета человека.

Чаще всего применяют такие препараты, как тактивин и тималин, интерфероны, лейкинферон. В любом случае. Подбирать необходимый препарат должен только врач-иммунолог.

Лекарства против туберкулеза выдаются людям бесплатно. Для этого нужно стать на учет в противотуберкулезный диспансер.

[1], [2], [3], [4], [5], [6], [7], [8], [9], [10]

При лечении туберкулеза в основном постоянно используется антибиотики рифампицин. Он сильный, достаточно эффективный, обладает мощным антибактериальным эффектом. До его появления туберкулез считался неизлечимой смертельной болезнью, от которой умирал каждый третий пациент. Но сегодня это средство дает нам возможность преодолеть заболевание.

Но и в этом случае существует проблема: бактерии сумели выработать устойчивость и к нему. Наблюдается все больше случаев, при которых возбудитель остается нечувствительным и лечение не приносит никаких результатов. В таком случае необходимо комбинировать препараты, искать эффективные комбинации. Многие врачи спасаются тем, что назначают рифампицин совместно с изониазидом. В такой комбинации усиливается как эффективность препаратов с точки зрения воздействия на возбудителя заболевания, так и увеличивается его токсичность и риск возникновения побочных эффектов для организма.

Проблему устойчивости удалось частично решать индийским ученым. Так, они изобрели новое соединение, которое пока еще обладает исключительной активностью в отношении возбудителей заболевания – десметилрифампицин. Это средство было синтезировано в биохимической лаборатории, представляет собой модификацию традиционного рифампицина. Обладает более выраженным антибактериальным действием в отношении микобактерий туберкулеза. Для достижения такого эффекта ученые моернизировали прекурсор лекарственного средства для лечения туберкулезной инфекции. Разработка выполнена молекулярно-генетическими и биохимическими методами. Пока бактериям не удавалось выработать устойчивость к этому соединению, поэтому на сегодня десметилрифампицин можно считать самым эффективным лекарственным средством против туберкулеза. Но проблема состоит в том, что средство еще не поступило в промышленное производство. Оно было получено только в лабораторных условиях, но для того чтобы оно стало доступно людям, необходимо пройти ряд доклинических и клинических исследований.

[11], [12], [13]

Проблема чувствительности и ее постоянного снижения – одна из самых актуальных тем современной фтизиатрии и пульмонологии. Туберкулез можно лечить антибиотиками. При этом появление нового лекарственного средства всегда сначала эффективно, но со временем у возбудителя вырабатывается к нему устойчивость, и антибиотик перестает действовать.

Выработка устойчивости является естественным механизмом адаптации микроорганизма к меняющимся условиям. Возбудители туберкулеза – микобактерии представляют собой крошечные микроорганизмы, которые также постоянно развиваются и стремятся к выживанию и повышению численности собственной популяции. Для этого постоянно появляются все новые и новые механизмы адаптации к действию антибиотиков.

Фармацевтическая промышленность, в свою очередь, стремится изучить эти механизмы и преодолеть их. Все новые эффективные средства преодолевают механизм устойчивости бактерий. Но со временем они вырабатывают новые факторы, и антибиотик вновь становится неэффективным, что побуждает фармацевтом на дальнейшие поиски лекарственных средств.

Решить проблему можно путем комбинации нескольких средств. Для того чтобы точно определить, насколько эффективным окажется антибиотик, проводят предварительный анализ на антибиотикочувствительность. Для этого у пациента берут на исследование биологический материал, который предположительно содержит возбудителей заболевания. При туберкулезе легких берут чаще всего смывы с поверхности носоглотки, глотки. Может потребоваться эндотрахеальный или альвеолярный секрет, мокрота, которую забирают методом пункции. Чаще всего больного просто просят собрать утреннюю порцию мокроты в чашку Петри и принести на исследование.

Затем исследуемый материал пересеивают на питательную среду, вносят факторы роста и помещают в условия термостата при оптимальных условиях для роста микроорганизма. Растет он очень медленно, даже при внесении факторов роста. В среднем, требуется примерно месяц на то, чтобы вырастить достаточное для дальнейшего исследования количество микроорганизмов. Рост микроорганизмов проверяют каждую неделю.

По достижении необходимых показателей роста, микроорганизмы идентифицируют путем проведения ряда иммунологических и биохимических тестов. Полученные данные сравнивают с определителем Берджи, что позволяет точно определить родовую и видовую принадлежность микроорганизма.

После этого приступают к исследованию собственно чувствительности к различным антибиотикам. Чаще всего применяют диско-диффузионный метод, при котором на чашку Петри с микроорганизмом помещают бумажные диски, пропитанные антибиотиком. Затем накрывают крышкой и инкубируют еще минимум неделю. После этого оценивают результаты. О чувствительности бактерий к антибиотику можно говорить в случае поя00вления зоны задержки роста бактерий, вокруг диска с антибиотиком. Диаметр измеряют при помощи обычной линейки или специальных инструментов. После этого о степени чувствительности судят по диаметру зоны задержки. Чем выше чувствительность, тем больше диаметр зоны задержки.

Затем при помощи метода десятичных разведений оценивают минимальную ингибирующую концентрацию антибиотика, при которой бактерия все еще сохраняет чувствительность. То есть делают серию последовательных разведений антибиотика с физиологическим раствором, при котором каждая последующая концентрация ниже предыдущей в 10 раз. Та концентрация, при добавлении которой все еще происходит задержка роста, хотя бы минимальная, считается МИК – минимальной ингибирующей концентрацией, при которой антибиотик все еще остается эффективным.

По зоне максимальной задержки роста, самой большой, определяют наиболее эффективную концентрацию, которая максимально полно угнетает рост микроорганизмов, или полностью его останавливает. На основании этих результатов и определяют необходимую концентрацию вещества, которое позволит подавить рост микроорганизмов и вылечить заболевание.

Всегда делают поправку на то, что результат получен в лабораторных условиях, которые считаются идеальными. Для микроорганизма созданы оптимальные условия, есть постоянный источник питательных веществ. Действие антибиотика также ничем не ограничено.

При попадании в организм таких условий не будет. Микроорганизм будет подвергаться воздействию иммунных факторов, должен искать механизмы защиты. Антибиотик частично нейтрализуется, начиная с попадания в ротовую полость, под действием слюны. Далее он растворяется в желудке. Также претерпевает трансформацию под действием ферментов, желудочного сока, соляной кислоты. Часть действующего вещества теряется в ходе всасывания через стенки ЖКТ.

При попадании в кровь, антибиотик также воспринимается клетками иммунной системы, как чужеродный агент, подвергается нейтрализующему воздействию со стороны лимфоцитов, нейтрофилов, других факторов иммунологической защиты.

Таким образом, проникая в очаг инфекции, конечная концентрация существенно снижается. Поэтому не удивительно, что дозировка должна существенно превышать результаты, полученные при лабораторном исследовании. Во сколько увеличить концентрацию в каждом конкретном случае решает врач индивидуально. Все зависит от степени тяжести заболевания, текущего состояния пациента, сопутствующих заболеваний и отягощающих факторов. Врач основывается на результатах лабораторных исследований, а также результатов опроса и осмотра пациента.

источник